Los microorganismos del suelo tienen la posibilidad de incrementar o reducir la efectividad biológica de los insecticidas. Ciertos incrementan su actividad y persistencia en el suelo por el hecho de que son degradados a otros compuestos más tóxicos (Edwards et al., 1957; Gannon y Bigger, 1958; Lichtenstein y Schulz, 1960; Miles et al., 1969). A este respecto, las implicaciones de la biodegradación de insecticidas en el suelo en los agroecosistemas fueron revisadas extensamente por Felsot . Las pérdidas económicas ocasionadas a la economía agrícola se tienen que a que la plaga consume, en sus primeros estados, materia orgánica y raíces, al paso que los mayores eligen las hojas de árboles como brevo, urapán, nacedero, frutillo y guayaba. La única de la que nos debemos preocupar en el huerto son de aquellas gallinitas ciegas que encontremos en el suelo ya que se alimentan de las raíces de las plantas. La gallina ciega es una larva o gusano que acostumbramos a comunmente localizar al elaborar la tierra o al añadir el compost en nuestro huerto.
Del mismo modo, los distintos estados o fases en una misma clase asimismo pueden cambiar su resistencia a estos artículos. Harris y Svec , demostraron que en cada estado de desarrollo de E. Messoria se incrementaba su tolerancia a artículos como DDT, aldrin y dursban. Los insecticidas tienden a ser mucho más eficientes y persistentes en suelos con bajos escenarios de temperatura y de humedad, puesto que los microorganismos degradadores del suelo aceleran su actividad bajo temperaturas cálidas y alto contenido de humedad .
Grupos de 12 larvas del tercer instar fueron expuestas a una suspensión de 1×10 8 conidios/ml. Las larvas fueron sumergidas por 20 segundos, más tarde fueron ubicadas sobre una toalla de papel para quitar el exceso de humedad. Finalmente todas las larvas tratadas fue puesta de forma individual una placa de cultivo de tejidos de 12 agujeros, una larva en cada orificio.
Los valores de las poblaciones pueden variar mucho entre suelos. Un gramo de suelo agrícola contiene varios millones de bacterias, centenares de miles de propágulos de hongos y decenas y decenas de millones de protozoarios y algas . En general, esto se origina por que las prácticas agrícolas como el arado, encalado, app de fertilizantes, etcétera, incrementan la actividad microbiana del suelo. Los suelos provenían de suelos arados y preparados para la siembra de maíz probablemente por esa razón se encontró ciudades altas de microorganismos.
Teniendo en cuenta la amenaza que suponen estas plagas para los cultivos ya hace bastante tiempo, se ha llevado a cabo un empleo masivo de artículos para su control, que a veces podría clasificarse como indiscriminado. Como resultado, se demostró que las larvas de gallina ciega han creado resistencia a los insecticidas comúnes que se han venido usando durante los últimos años . Se puede emplear hongos entomopatógenos y bacterias para supervisar las larvas de gallina ciega. Estos son Beauveria bassiana, Metarhizium anisopliae, Bacillus popilliae y Heterorhabditis bacteriophora, respectivamente.
0,05) a plantas de maiz (Zea mays L.) en V2, mientras que en la etapa V4 se requieren de cuatro larvas por planta. Se encontro que el hongo entomopatogeno Metarhizium anisopliae Metsch (1×105 esporas/cm2) y la combinacion de M. La semilla que cultivemos puede rociarse con insecticidas a fin de que la plaga no se acerque. Tras ello, se deberá usar insecticidas granulados en el suelo, puesto que atacan a las raíces.
Es el proceso más esencial en la duración media de un insecticida en el suelo, donde se ven involucrados procesos como la hidrolisis, la oxidación y la reducción . Mediante la hidrólisis, el producto aplicado tiene una reacción con el agua (suelos en especial húmedos) y se producen compuestos menos tóxicos. A través de la oxidación, un átomo de oxígeno se añade a una molécula del insecticida, facilitando su humillación. En el proceso de reducción, una molécula del insecticida se considera reducida si su concentración de hidrógeno incrementa o la de oxígeno disminuye.
De todos y cada uno de los aislamientos evaluados, sobresalen los aislamientos BbGC07 con 45 % de mortalidad, seguido por BbGC15 con 35% y BbGC03 con 33%, todos del género Beauveria. Los análisis se hicieron con base en las mortalidades totales considerando mortalidad por micosis y mortalidad por causas no identificadas. Sin embargo, al ver los escenarios de mortalidad confirmada por hongo únicamente, otros aislamientos sobresalen, como por poner un ejemplo BbGC03, BbGC13, BbGC15, MaGC01, BbGC11, BbGC09, BbGC14 y BbGC16 (Fig.3). Despues de 32 días de inoculadas con 12 aislamientos de Beauveria bassiana y 4 de Metarhizium anisopliae.
Para cotejar susceptibilidad relativa hacia los aislamientos escogidos. Los métodos de inoculación e incubación asi como de toma de datos son los mismos descritos en la sección Efecto de la temperatura en la virulencia de los aislamientos seleccionados hacia larvas de Phyllophaga spp. Empleando los mismos aislamientos de la sección 3.7., se evaluara el efecto de la temperatura en la virulencia de los aislamientos hacia larvas de Phyllophaga spp. Para este experimento se tienen ya las incubadoras listas a las temperaturas elegidas que son de 15, 25 y 30 C. Para este experimento, además de las larvas, se necesita de diversos tipos de suelo para los experimentos.
